infercnv的基本使用

雨点打透心脏的1/2处 2024-03-22 13:39 55阅读 0赞

InferCNV可以用于肿瘤单细胞RNA-Seq数据中鉴定大规模染色体拷贝数变异，例如整个染色体或大片段染色体的扩增或缺失。基本思路是在整个基因组范围内，将每个肿瘤细胞基因表达与平均表达或“正常”参考细胞基因表达对比，确定其表达强度。

## 1. 安装 ##

BiocManager::install("infercnv")
    library("infercnv")

如果遇到安装问题可以参考[infercnv安装遇到的问题][infercnv]。

## 2. 输入 ##

在进行分析之前，需要准备三个文件：

*  单细胞表达矩阵文件
 *  细胞类型文件
 *  基因在染色体上的位置信息文件

基因在染色体上的位置信息文件第一列为gene symbol名称，第二列是染色体号，后两列是基因的始末位置，制表符分隔。格式如下：

![e23ea8e63d164835b5204f4aa2b54d91.png][]

这个文件很多只是说了里面的具体内容但是没有说怎么得到的，我也是花了一段时间才知道怎么得到的。

1.一些基因组位置文件是从共同参考文献生成的，并在[TrinityCTAT][]上提供。下载你需要的文件。

2.构建自己自定义的：

1）CMD端获取最新的gtf文件：

wget ftp://ftp.ebi.ac.uk/pub/databases/gencode/Gencode_human/release_35/gencode.v35.annotation.gtf.gz

2）Python运行：先从infercnv的github上[https://github.com/broadinstitute/infercnv/blob/master/scripts/gtf\_to\_position\_file.py][https_github.com_broadinstitute_infercnv_blob_master_scripts_gtf_to_position_file.py]下载gtf\_to\_position\_file.py脚本，存为.py后缀的文件，运行

python gtf_to_position.py --attribute_name "gene_name"  gencode.v35.annotation.gtf gene_pos.txt

输出文件gene\_pos.txt就是我们想要的基因位点数据文件。

因为我的数据已经用Seurat处理过了，所以我直接用Seurat对象读取另外两个文件

library(infercnv)
    pbmc <- readRDS('../data/pbmc.RDS')
    table(pbmc$seurat_clusters)
    celltype <- cbind(colnames(pbmc),as.character(pbmc@meta.data$seurat_clusters))
    head(celltype)
    write.table(celltype,file = "celltype_pbmc.txt",
                sep = '\t',row.names=F,col.names=F,quote=F) # 准备细胞类型文件
    mtx <- pbmc@assays$RNA@counts

## 3. 使用 ##

infercnv_obj = CreateInfercnvObject(
      raw_counts_matrix = mtx,
      annotations_file = 'celltype_pbmc.txt',
      gene_order_file="gencode_v19_gene_pos.txt",
      ref_group_names=c("4",'8'))
    infercnv_obj = infercnv::run(infercnv_obj,
                                 cutoff=0.1, 
                                 # use 1 for smart-seq, 0.1 for 10x-genomics
                                 out_dir = 'infercnv/',# dir is auto-created for storing outputs
                                 cluster_by_groups=T, 
                                 # 选择TRUE是按样本分组 改为FALSE会进行按另一个参数k_obs_groups给出的分组数（默认为1）进行分组
                                 denoise=F,
                                 HMM=F, # 是否基于HMM预测CNV,True的话时间很久
                                no_prelim_plot=TRUE,
                                 analysis_mode ='subclusters' # 区分肿瘤亚型，慢
                                )

## 4 输出 ##

我认为重要的输出文件infercnv.png

降噪之后生成的最终热图，图中的数值是"Residual expression values"，可以简单理解为基因表达值的另一种形式；

![b7fb70a2d77446b9a0dca02d6843b67b.png][]

## 5. 画图 ##

infercnv包也包含了画图函数plot\_cnv，这个使用的人不多

library(RColorBrewer)
    infercnv::plot_cnv(infercnv_obj, #上两步得到的infercnv对象
                       plot_chr_scale = T, #画染色体全长，默认只画出（分析用到的）基因
                       output_filename = "better_plot",output_format = "pdf", #保存为pdf文件
                       custom_color_pal =  color.palette(c("#8DD3C7","white","#BC80BD"), c(2, 2))) #改颜色

![e3537d75267c432bb6b252ca56297501.png][]

[infercnv]: https://blog.csdn.net/weixin_56845253/article/details/130552665
[e23ea8e63d164835b5204f4aa2b54d91.png]: https://image.dandelioncloud.cn/pgy_files/images/2024/03/22/fa617ec711ae4f27801f4ec778f0b8ae.png
[TrinityCTAT]: https://data.broadinstitute.org/Trinity/CTAT/cnv/
[https_github.com_broadinstitute_infercnv_blob_master_scripts_gtf_to_position_file.py]: https://link.zhihu.com/?target=https%3A//github.com/broadinstitute/infercnv/blob/master/scripts/gtf_to_position_file.py
[b7fb70a2d77446b9a0dca02d6843b67b.png]: https://image.dandelioncloud.cn/pgy_files/images/2024/03/22/cf0a7c8b372d4f8f83852f469323c2f4.png
[e3537d75267c432bb6b252ca56297501.png]: https://image.dandelioncloud.cn/pgy_files/images/2024/03/22/43e99d41e57144c5b6340e8a94958eff.png